Получение клеточных культур лекарственных растений
Аннотация
Эта работа была посвящена получению клеточных культур лекарственных растений, прежде всего исследованию различных методов стерилизации семян и эксплантов и их культивирования на средах с различным фитогормональным составом (с добавлением кинетина и без его добавления). Процент контаминации (%) был показателем для определения того, какой метод является лучшим через 14 дней культивации. Для растений цикория показано, что на среде с кинетином при выращивании стерильных семян протекает формирование каллуса, в то время как на среде без кинетина образуются микрорастения. Также в ходе работы были получены экспланты из стерильных проростков, а также нестерильных с последующей стерилизацией. Экспланты выращивались на различных средах. Наилучшие результаты на плотной среде были получены при выращивании каллусов цикория. Для клеток цикория была предпринята попытка выращивания суспензионной культуры. Показано, что больший прирост биомассы наблюдается на питательной среде без кинетина.
This Thesis focused on obtaining callus of medicinal plants and the methods of sterilization and cultivation of these cells which were grouped into 4 (method A, B, C and D). The level of percentage (%) contamination was used to determine which method was suitable and less prone to contamination after 14 days. The observable difference between sterilized and unsterilized cells after 2 weeks was determined; sterilized plant cells grew more rapidly than the unsterilized plant cells and callus of chicory, Bee balm and Rhodiola were obtained and grown in solid media of + and - kinetin for 2 weeks. The percentage contamination was determined for the plant cells grown in each of the media (+ and – kinetin). The result of the dry wet and wet weight showed some significance difference between the callus grown in the media with and without kinetin. All results were presented on tables and charts.
This Thesis focused on obtaining callus of medicinal plants and the methods of sterilization and cultivation of these cells which were grouped into 4 (method A, B, C and D). The level of percentage (%) contamination was used to determine which method was suitable and less prone to contamination after 14 days. The observable difference between sterilized and unsterilized cells after 2 weeks was determined; sterilized plant cells grew more rapidly than the unsterilized plant cells and callus of chicory, Bee balm and Rhodiola were obtained and grown in solid media of + and - kinetin for 2 weeks. The percentage contamination was determined for the plant cells grown in each of the media (+ and – kinetin). The result of the dry wet and wet weight showed some significance difference between the callus grown in the media with and without kinetin. All results were presented on tables and charts.